GB 4789.2-2022: 菌落总数测定
本标准规定了测定食品中需氧菌总数的方法,是评价食品卫生状况的常用指标。菌落总数反映了食品在生产、加工、运输、储存过程中受微生物污染的程度。
详细操作步骤:
-
样品稀释:
- 固体/半固体: 称取 25g 样品 + 225mL 稀释液 (磷酸盐缓冲液/生理盐水),用均质器 (8000-10000 r/min) 均质 1-2 min 或拍击式均质器拍打 1-2 min,制成 1:10 稀释液。
- 液体: 吸取 25mL 样品 + 225mL 稀释液,充分混匀 (可用带玻璃珠的锥形瓶或拍击式均质器),制成 1:10 稀释液。
- 用 1mL 无菌吸管吸取 1mL 的 1:10 稀释液,加入含 9mL 稀释液的试管中,振荡混匀,制成 1:100 稀释液。
- 依次制备 10 倍系列稀释液,每次更换吸管。
- 接种: 根据样品污染情况,选择 1-3 个适宜稀释度 (液体可选原液),每个稀释度吸取 1mL 样品匀液加入 2 个无菌培养皿中。同时做空白对照 (1mL 稀释液)。
- 倾注培养基: 及时向每个培养皿中倾注 15-20mL 已冷却至 46-50°C 的平板计数琼脂培养基 (PCA),旋转培养皿使样品与培养基混合均匀。
- 培养: 待琼脂凝固后,将平板倒置,放入 36°C±1°C 恒温培养箱培养 48h±2h。水产品需在 30°C±1°C 培养 72h±3h。(若有蔓延菌落风险,可在凝固后覆盖一层薄层琼脂)。
-
菌落计数:
- 选取菌落数在 30-300 CFU 之间、无蔓延菌落的平板进行计数。低于 30 CFU 记录具体数,高于 300 CFU 记为“多不可计 (TNTC)”。
- 若有片状菌落,则该平板不宜采用;若片状不到一半且其余部分均匀,可计半皿乘以 2。
- 链状生长按每条链计为一个菌落。
- 结果计算与报告: 根据标准提供的公式 (考虑一个或两个稀释度在计数范围内、全高于或全低于计数范围等情况) 计算菌落总数。按规定进行数值修约,以 CFU/g 或 CFU/mL 为单位报告。空白对照不得有菌落生长。
GB 5009.9-2023: 食品中淀粉的测定
本标准规定了测定食品中淀粉含量的方法,包括酶水解法、酸水解法和适用于肉制品的皂化-酸水解法。淀粉含量是食品营养成分和品质的重要指标。
详细操作步骤 (以第一法: 酶水解法为例):
-
样品制备与预处理:
- 取可食部分磨碎过 40 目筛,称取 2-5g 样品。
- 置于滤纸漏斗中,用 50mL 石油醚或乙醚分次洗除脂肪。
- 用 85% 乙醇溶液分次洗去可溶性糖,直至微糖检验 (α-萘酚法) 呈阴性。(对含麦芽糊精样品,先用 85% 乙醇洗,再用 40% 乙醇洗至阴性)。
- 滤干乙醇,将残留物和滤纸用 50mL 水洗入烧杯。
-
酶解:
- 将烧杯置于沸水浴加热至糊化 (约 15 min)。
- 冷却至 60°C 以下,加入 20mL α-淀粉酶溶液 (5g/L)。
- 在 55-60°C 保温 1h,时时搅拌。
- 取 1 滴加碘液检查,应不显蓝色 (若显蓝,需重新糊化、加酶、保温)。
-
酸水解:
- 将酶解液加热至沸,冷却后移入 250mL 容量瓶,用水定容、混匀、过滤 (弃初滤液)。
- 准确吸取 50.00mL 滤液至 250mL 锥形瓶,加 5mL 盐酸 (1+1)。
- 装上回流冷凝器,在沸水浴中回流 1h。
-
中和与定容:
- 冷却后加 2 滴甲基红指示液,用 NaOH 溶液 (200g/L) 中和至黄色刚出现。
- 溶液转入 100mL 容量瓶,洗涤锥形瓶并入容量瓶,用水定容至刻度,混匀备用。
-
滴定测定 (费林法):
- 标定碱性酒石酸铜溶液: 用已知浓度的葡萄糖标准溶液滴定一定体积的碱性酒石酸铜甲、乙混合液,记录消耗体积 V₀,计算其相当于葡萄糖的质量 m₁。
- 试样预测: 用待测样液滴定相同体积的碱性酒石酸铜混合液至终点,估算消耗体积。
- 试样测定: 精确滴定,记录平均消耗体积 V₁。
- (若浓度过低,可反滴定)。
- 计算与报告: 根据 m₁ 和 V₁ (或反滴定结果),计算出样品中葡萄糖的质量 X₁ (或 X₂),减去试剂空白值 X₀,再乘以换算系数 0.9,除以样品取样量,得到淀粉含量 (%)。
注:第二法 (酸水解法) 和第三法 (皂化-酸水解法) 在预处理和水解步骤上有所不同,但最终都是测定水解产生的葡萄糖含量。详情请查阅标准原文。
GB/T 4789.3-2003: 大肠菌群测定
本标准规定了使用最可能数法 (MPN) 测定食品中大肠菌群的方法。大肠菌群是常用的粪便污染指示菌,其检出情况可用于评价食品的卫生质量。
详细操作步骤 (MPN法):
- 样品稀释: 同菌落总数测定,制备 1:10 样品匀液,并进行系列 10 倍梯度稀释。
-
初步发酵试验 (推测性):
- 根据要求选择 3 个连续的适宜稀释度。
- 每个稀释度接种 3 管乳糖胆盐 (LSTB) 发酵管 (接种量 ≥1mL 用双料,<1mL 用单料)。
- 置于 36°C±1°C 培养箱培养 24h±2h。
- 观察小倒管内是否产气。若所有管均不产气,报告大肠菌群阴性。
-
分离培养 (证实性):
- 将所有产气的 LSTB 发酵管培养物,分别用接种环划线接种到伊红美蓝 (EMB) 琼脂平板上。
- 置于 36°C±1°C 培养箱培养 18-24h。
- 观察平板上是否有典型的可疑大肠菌群菌落 (如深紫色带金属光泽或粉红色)。
-
证实试验:
- 从 EMB 平板上挑取 1-2 个可疑菌落。
- 进行革兰氏染色:应为革兰氏阴性、无芽胞杆菌。
- 同时接种到乳糖 (Lactose) 发酵管中。
- 置于 36°C±1°C 培养箱培养 24h±2h,观察是否产气。
- 若染色符合且乳糖管产气,则证实为大肠菌群阳性。
- 结果报告: 根据每个稀释度被证实为大肠菌群阳性的管数 (如 3-2-1),查阅 MPN 检索表,报告每 100g (mL) 样品中大肠菌群的最可能数。
-
(可选) 粪大肠菌群测定:
- 将初步发酵 (LSTB) 产气的培养物转接到 EC 肉汤管中。
- 置于 44.5°C±0.2°C 水浴培养 24h±2h。
- 产气的 EC 肉汤管再转种 EMB 平板,36°C±1°C 培养 18-24h。
- 平板上出现典型菌落者,证实为粪大肠菌群阳性。根据阳性管数查 MPN 表报告。